農桿菌瞬時表達CRISPR編輯基因和快速篩選突變植株新方法
最近，美國康涅狄格大學和南京農業大學李義教授團隊在Horticulture Research發表了題為“A method for the production and expedient screening of CRISPR/Cas9-mediated non-transgenic mutant plants”的研究論文，首次系統報道利用農桿菌在植物細胞中瞬時表達Cas9和sgRNA序列而產生非轉基因突變體并高效快速篩選的新方法。 該技術為童期長的多年生植物和有性生殖后會產生性狀分離的雜合一年生植物提供了一個快速獲得不含有外源基因的基因編輯突變體的新方法。 1背景知識 以CRISPR /Cas9為代表的基因編輯技術正在被廣泛地應用于植物基因功能鑒定和品種改良等領域。為了獲得基因編輯植株，即突變體，一般情況下是將Cas9和sgRNA等外源序列整合到植物基因組后，通過它們的穩定表達實現目標基因的編輯，獲得突變......閱讀全文
農桿菌瞬時表達CRISPR編輯基因和快速篩選突變植株新方法
最近，美國康涅狄格大學和南京農業大學李義教授團隊在Horticulture Research發表了題為“A method for the production and expedient screening of CRISPR/Cas9-mediated non-transgenic mutan
農桿菌瞬時表達CRISPR編輯基因和快速篩選突變植株新方法
最近，美國康涅狄格大學和南京農業大學李義教授團隊在Horticulture Research發表了題為“A method for the production and expedient screening of CRISPR/Cas9-mediated non-transgenic mutan
農桿菌瞬時表達CRISPR編輯基因和快速篩選突變植株新方法
最近，美國康涅狄格大學和南京農業大學李義教授團隊在Horticulture Research發表了題為“A method for the production and expedient screening of CRISPR/Cas9-mediated non-transgenic mutan
Cell－Res：CRISPR/Cas9瞬時表達基因組編輯體系
基因組編輯技術是最新發展起來的植物基因功能研究及定向育種的重要手段。在植物中實現基因組編輯的常規方法是將序列特異性核酸酶（如CRISPR/Cas9）的編碼DNA轉化植物細胞，穩定表達進而實現對目的基因的定點編輯。這種情況下，CRISPR載體整合在植物染色體中，需通過后代分離獲得不含CRISPR/
中國農大權威期刊發表CRISPR研究
通過CRISPR/Cas9基因組編輯系統的組成型過量表達而產生的擬南芥突變體，通常在T1代是嵌合體。七月二十一日，來自中國農業大學的研究人員在國際生物學權威期刊《Genome Biology》發表的一項研究中，利用卵細胞特異性的啟動子，來驅動Cas9的表達，并以很高的效率獲得了多個靶基因的非嵌合
基因組編輯調控植物內源基因翻譯效率的實驗流程
上游開放閱讀框uORF廣泛存在于動植物基因的5’非翻譯區，通常能夠抑制下游主開放閱讀框pORF的翻譯。中國科學院遺傳與發育生物學研究所高彩霞研究組率先利用CRISPR/Cas9技術對uORF進行編輯，發現能夠顯著提高目標基因的翻譯效率，建立了利用基因組編輯調控內源基因蛋白質翻譯效率的新方法，相關成果
基因組編輯調控植物內源基因翻譯效率的實驗流程公布
上游開放閱讀框uORF廣泛存在于動植物基因的5’非翻譯區，通常能夠抑制下游主開放閱讀框pORF的翻譯。中國科學院遺傳與發育生物學研究所高彩霞研究組率先利用CRISPR/Cas9技術對uORF進行編輯，發現能夠顯著提高目標基因的翻譯效率，建立了利用基因組編輯調控內源基因蛋白質翻譯效率的新方法，相關
遺傳發育所在植物基因組編輯突變體篩選方法研究取進展
如何快速高效進行突變體檢測和鑒定是植物基因組編輯技術迅速發展面臨的重要問題之一。目前植物基因組編輯突變檢測方法主要包括PCR/RE、T7EI錯配切割、臨界退火溫度PCR (ACT-PCR)、Sanger測序和二代測序(NGS)等。以上所有的檢測方法都基于PCR反應，且都有各自的不足之處。PCR/
基因組編輯調控植物內源基因翻譯效率實驗流程發布
上游開放閱讀框uORF廣泛存在于動植物基因的5’非翻譯區，通常能夠抑制下游主開放閱讀框pORF的翻譯。中國科學院遺傳與發育生物學研究所高彩霞研究組率先利用CRISPR/Cas9技術對uORF進行編輯，發現能夠顯著提高目標基因的翻譯效率，建立了利用基因組編輯調控內源基因蛋白質翻譯效率的新方法，相關
遺傳發育所在植物基因組編輯方法研究中取得進展
基因組編輯技術是最新發展起來的植物基因功能研究及定向育種的重要手段。在植物中實現基因組編輯的常規方法是將序列特異性核酸酶（如CRISPR/Cas9）的編碼DNA轉化植物細胞，穩定表達進而實現對目的基因的定點編輯。這種情況下，CRISPR載體整合在植物染色體中，需通過后代分離獲得不含CRISPR/
遺傳發育所在植物基因組編輯方法研究中取得進展
基因組編輯技術是最新發展起來的植物基因功能研究及定向育種的重要手段。在植物中實現基因組編輯的常規方法是將序列特異性核酸酶（如CRISPR/Cas9）的編碼DNA轉化植物細胞，穩定表達進而實現對目的基因的定點編輯。這種情況下，CRISPR載體整合在植物染色體中，需通過后代分離獲得不含CRISPR/
遺傳發育所在小麥DNAfree基因組編輯方法研究中取得進展
CRISPR/Cas9是目前應用最為廣泛的基因組編輯技術，已在作物基因功能研究以及品種改良中取得了巨大的成功。常規植物基因組編輯手段多通過農桿菌或基因槍的方法將CRISPR/Cas9 DNA表達框轉入并整合到植物基因組中，進而發揮功能對目的基因進行編輯。但是這些方法多存在許多不足，如較高的潛在脫
CRISPR/Cas9驅動的瞬時表達系統
維克森林再生醫學研究所的科學家改進了DNA編輯工具，縮短了編輯蛋白停留在細胞內的時間，他們稱這種新方法為“打了就跑”。 CRISPR技術用于改變DNA序列和改變基因功能，CRISPR/Cas9是一種酶，它像剪刀一樣，在特定位置切割兩條DNA鏈，添加、移除或修復DNA片段，但CRISPR/Cas
中科院遺傳發育所水稻基因組編輯研究取得重要新進展
水稻突變體是進行水稻功能基因組學基礎研究和水稻分子設計育種的重要材料。常規的水稻突變體來源于自發突變或化學、物理及生物的誘變，具有很大的隨機性和局限性，不能滿足大規模的水稻功能基因組學研究和水稻分子設計育種的需求。利用高效便捷的CRISPR/Cas9基因組編輯技術和高通量的寡核苷酸芯片合成技術可
什么是瞬時表達和穩定表達？
瞬時表達：外源片段不能隨細胞分裂而一同復制，導致表達時間短暫，且表達量隨時間逐漸下降。穩定表達：是指外源片段整合入細胞基因組中，并能隨細胞分裂穩定傳遞下去，表達量長時間處于穩定水平。那穩定株，顧名思義當然是屬于穩定表達的體系了。
天津工生所谷氨酸棒桿菌CRISPR/Cas9基因組編輯獲進展
谷氨酸棒桿菌是一個重要的氨基酸生產菌株，其氨基酸產量每年超過400萬噸，近年來被廣泛用于生產各種天然和非天然產物，預計到2020年其發酵產品市值可達204億美元。傳統的工業菌株主要依賴長期的理化誘變及篩選獲得，基因組水平實現快速、高效的理性編輯依然是谷氨酸棒桿菌代謝工程改造的難點。質粒提供模板的
天津工生所谷氨酸棒桿菌CRISPR/Cas9基因組編輯獲進展
谷氨酸棒桿菌是一個重要的氨基酸生產菌株，其氨基酸產量每年超過400萬噸，近年來被廣泛用于生產各種天然和非天然產物，預計到2020年其發酵產品市值可達204億美元。傳統的工業菌株主要依賴長期的理化誘變及篩選獲得，基因組水平實現快速、高效的理性編輯依然是谷氨酸棒桿菌代謝工程改造的難點。 近日，中國
我國科學家獲得全球首個純合基因編輯橡膠苗
近日，中國熱帶農業科學院橡膠研究所組培與轉基因團隊在全球率先獲得了橡膠樹CRISPR/Cas9純合基因編輯橡膠苗。相關研究成果在線發表于《經濟作物和產品》（Industrial Crops and Products）。橡膠樹基因編輯植株：上排為嵌合植株；下排為純合植株。中國熱科院供圖該團隊前期已實現
清華百人計劃發表CRISPR新成果
CRISPR/Cas已成為強有力的基因組編輯技術，并已成功地應用于 許多生物，其中包括幾個植物物種。然而，在植物中，基因組編輯試劑載體的傳遞仍然是一個挑戰。最近，來自清華大學和中科院微生物研究所的研究人員，在 Nature子刊《Scientific Reports》發表的一項研究中，報道了一個基
利用RNAi和CRISPR/Cas9技術結合獲得不含轉基因成分植株
基因編輯技術因其突變位點精準、突變效率高、操作便捷等優勢成為基因組研究的有力工具。更為重要的是，其可以生成不含有轉基因成分的產品而成為生物技術育種家的熱門武器。基因編輯產品開發的流程通常為將基因編輯的載體轉化作物后，在轉基因T0代選出編輯成功、目標性狀突出的事件，再在T1代利用自交分離，選出基因
快速便宜的CRISPR/Cas9突變體篩選方法
新的基因組編輯工具——如ZFNs、TALENs以及最近的CRISPR/Cas9系統，已經大大提高了在不同動物模型中敲除基因的能力，包括斑馬魚。然而，對數量龐大的動物進行篩選，所需的時間和成本，仍然是一個瓶頸。 最近，意大利多恩動物研究所（Stazione zoologica Anton Doh
基因編輯crispr原理
ZFNZFN，即鋅指核糖核酸酶，由一個 DNA 識別域和一個非特異性核酸內切酶構成。DNA 識別域是由一系列 Cys2-His2鋅指蛋白（zinc-fingers）串聯組成（一般 3~4 個），每個鋅指蛋白識別并結合一個特異的三聯體堿基。鋅指蛋白源自轉錄調控因子家族（transcription fa
基因編輯crispr原理
ZFNZFN，即鋅指核糖核酸酶，由一個 DNA 識別域和一個非特異性核酸內切酶構成。DNA 識別域是由一系列 Cys2-His2鋅指蛋白（zinc-fingers）串聯組成（一般 3~4 個），每個鋅指蛋白識別并結合一個特異的三聯體堿基。鋅指蛋白源自轉錄調控因子家族（transcription fa
基因編輯crispr原理
ZFNZFN，即鋅指核糖核酸酶，由一個 DNA 識別域和一個非特異性核酸內切酶構成。DNA 識別域是由一系列 Cys2-His2鋅指蛋白（zinc-fingers）串聯組成（一般 3~4 個），每個鋅指蛋白識別并結合一個特異的三聯體堿基。鋅指蛋白源自轉錄調控因子家族（transcription fa
科學家在植物中實現超長基因片段高效精準無贅敲入
5月17日，國際學術期刊《自然-通訊》（Nature Communications）在線發表了中國科學院上海植物逆境生物學研究中心朱健康研究組題為CRISPR/Cas9-mediated gene targeting in Arabidopsis using sequential transfo
科學家創建簡單高效棉花內源基因編輯篩選方法
近日，中國農業科學院棉花研究所棉花抗逆鑒定課題組創建了一種簡單高效的耐鹽相關內源基因編輯突變體篩選方法，應用CRISPR/Cas9系統精確有效地編輯棉花的兩個耐鹽相關的內源基因，為棉花的基因功能研究和分子育種提供了新思路。相關論文在線發表于《科學報告》。 CRISPR/Cas9來自微生物的
基因編輯器CRISPR讓突變小鼠觸手可得
Rudolf Jaenisch 在1974 年培育出首個轉基因小鼠，并且首次證明了CRISPR 在產生基因敲除小鼠方面的威力。 2013年年初，Michael Wiles同美國緬因州杰克遜實驗室的高層管理者坐在一起，并且告訴了他們一種擁有驚人威力的DNA剪切新方法。這家簡稱為JAX的實驗室利用基因
中美科學家聯合研究構建植物CRISPRCas12b基因組編輯系統
2020年03月09日，美國馬里蘭大學Yiping Qi博士及電子科技大學張勇教授課題組合作于《Nature Plants》發表了題名《CRISPR-Cas12b enables efficient plant genome engineering》的研究論文。該研究針對植物（水稻）基因組結構及
天津工生所在Cas9基因組編輯技術研究中取得進展
CRISPR/Cas系統是細菌針對噬菌體和質粒DNA入侵進化形成的一種獲得性免疫系統，廣泛存在于眾多原核生物基因中。CRISPR/Cas主要分為TypeI、TypeII和TypeIII三種類型。經過改造的Ⅱ型CRISPR/Cas9系統能夠利用RNA介導的DNA靶向功能對多種生物基因組的任意區域進
流程化、更高效的基因編輯工具：打開腸道微生物組“窗口”
基因，就像是指揮官手里拿著的建筑總圖紙，調控著生物體的一切生命活動。這份施工的圖紙決定了整個建筑的所有呈現形式。那怎么才能對“圖紙”——基因進行編輯呢？CRISPR/Cas編輯系統被認為是最佳的一種工具。 1月6日，中國科學院深圳先進技術研究院合成生物學研究所、深圳合成生物學創新研究院戴磊課題