一、效應細胞的制備
NK功能效應細胞可取靜止的PBMC,或經不同細胞因子誘導的PBMC。 LAK功能的效應細胞通常將PBMC或腫瘤浸潤淋巴細胞(TIL)或體液(癌性胸腹水)中純化的淋巴細胞(1×106 /ml)在含有高劑量IL-2(200~1000 μ/ml)的10 %FCS RPMI1640 誘導2~5 天而成。 二、殺傷試驗 主要有4 h 51Cr釋放法和3H-TdR釋放法,前者要求51Cr質量好,同位素半衰期較短,操作所需時間短;后者需要無菌操作,所需時間較長。 1. 51Cr 4 小時釋放試驗 (1)收獲處于對數生長期的靶細胞(K562,LiBr等)洗滌后調整細胞濃度為2×106 /ml (2)取1×106細胞(0.5 ml),加Na251CrO4 100 μci,37 ℃孵育2~3 h,每15 min輕輕振搖一次 (3)用10 %FCS RPMI1640洗滌3 次,每次800 rpm,5 min (4)重懸細胞濃度1×105 /ml (5)96 孔V型或U型培養板中,每孔加100 μl(1×104細胞),每份3 個復孔
(6)每孔加入100 μl不同細胞濃度的效應細胞,最大釋放組加入100 μl,1 %TritonX-100;自然釋放組加100 μl完全培養基 (7)200 g 離心1 min,37 ℃、CO2孵箱 4 h,200 g 離心1 min (8)每孔取出100 μl上清,γ計數儀上測定cpm值 (9)計算 實驗組cpm-自然釋放cpm 特異性殺傷率(%)=───────────── 最大釋放cpm-自然釋放cpm 2. 3H-TdR釋放試驗 (1)收獲處于對數生長期的靶細胞(K562、LiBr等)洗滌后調整細胞濃度為2×106 /ml,加3H-TdR 20 μci (2)37 ℃孵育2~3 h (3)用10 %FCS RPMI1640洗滌3 次,每次800 rpm,5 min 調整細胞濃度為1×105 /ml (4)96 孔U型或平底培養板中,每孔加100 μl(1×104細胞),每份3個復孔 (5)每孔加入100 μl不同細胞濃度的效應細胞,最大釋放組加100 μl 1%TritonX-100,自然釋放組加100 μl完全培養基 (6)CO2孵箱培養18~24 h (7)每孔吸出100 μl上清,加入胰蛋白酶(終濃度0.15 %)和DNA酶(終濃度為0.0125 %) (8)繼續孵育30 min (9)用細胞收集儀收獲于玻璃纖維紙上 (10)干燥后,移入液閃瓶中,加入1 ml閃爍液,β液閃儀中測cpm值 (11)計算
實驗組cpm 特異性釋放率(%)=(1- ────── )×100% 對照組cpm 展開 |