一、材料與試劑準備 1. 材料:凋亡細胞。 2. 蛋白酶K(500 μg/ml), 醋酸鉀氯仿(8 mol/L),無水乙醇,70%乙醇,2%瓊脂糖凝膠。 3. 白細胞裂解液:pH8.0,10 mmol/L Tris-HCl,10 mmol/L NaCl,10 mmol/L EDTA,1% SDS。 二、操作步驟 1. 收集凋亡細胞:取1~2×106 個細胞,離心后,立即用70%酒精(-20℃)固定2 h。 2. 洗滌:取出酒精固定的細胞,1 000 r/min離心5 min ,去掉上清液,PBS洗二次。 3. 裂解細胞:加400 μl細胞裂解液,充分混勻再加蛋白酶K 100 μl,置65℃水浴消化2小時或過夜。 4. 蛋白處理:加75 μl 8 mol/L的醋酸鉀,4℃15 min,再加750 μl氯仿,充分混勻后,10 000 r/min離心10 min后,將上清移至一新的Eppendorf管中。 5. 沉淀DNA:加入750μl無水乙醇,上下輕柔顛倒混合,即可見乳白色沉淀,若不明顯時可置-20℃過夜,12 000 r/min離心10 min,去上清。 6. 洗滌DNA:加1 ml 70%乙醇,混勻,10 000 r/min 離心5 min,去上清。 7. 溶解DNA:根據 DAN 沉淀的大小,加一定量的蒸餾水或TE,37℃溶解。 8. 測定DNA濃度。 9. 2%瓊脂糖凝膠電泳80 V 2小時。 三、結果判斷 出現梯狀電泳條帶,最小的條帶為180~200 bp,其他的條帶為其整倍數大小。壞死細胞則出現彌散的電泳條帶,無清晰可見的條帶。正常細胞DNA基因條帶因分子量大,遷移距離短,故停留在加樣孔附近。 展開 |