| 實驗方法原理 |
非變性凝膠電泳通常是在高 pH(8.8)緩沖液條件下進行。這時,多數蛋白質帶負電荷,并向陽極遷移。 |
|---|---|
| 實驗材料 | 蛋白質溶液 |
| 試劑、試劑盒 | 丙烯酰胺 雙丙烯酰胺 Tris 堿 鹽酸 過硫酸銨 TEMED 甘氨酸 甘油 溴酚藍 甲醇 冰醋酸 |
| 儀器、耗材 | Bio-Rad Min-Protean II 凝膠電泳槽 微量注射器或微量加樣器 染色和脫色用的小容器 |
| 實驗步驟 |
1. 工作溶液配制
2. 工作溶液用量 (1)制備不同厚度電泳凝膠所需的溶液體積 制備兩塊 6 cm×8 cm 的凝膠
配制量應比實際用量稍多些。 (2)X% 分離膠的計算
3. 制備分離膠 (1) 按操作指南裝配好灌膠用的模具;
(2) 將 A 液、B 液和水在小的三角瓶或試管中混合(由于丙烯酰胺具有神經毒性。 應戴手套操作); (3) 在溫和攪拌下,加入過硫酸銨,TEME 混勻。由于這一步中發生聚合,動作要迅速; (4) 將上述膠液用滴管移入凝膠模具; (5) 加完分離膠后,立即輕輕在其頂部覆蓋 1~5 mm 的水垣; (6) 靜置 30~60 min,待凝膠聚合;當凝膠聚合后,在分離膠和水層之間將出現一個明顯的界面,這時將凝膠稍微傾斜。 判斷凝膠是否聚合。 4. 堆積膠的制備 (1) 除去覆蓋在分離膠上的水層; (2) 在小三角燒瓶或試管中,將 A 液,C 液和蒸餾水混合; (3) 在溫和攪拌下,加入過硫酸銨和 TEMED,混合均勻; (4) 吸取堆積膠溶液加到分離膠之上,直至溶液到達前玻璃板的頂部。 (5) 將梳子小心的插入到兩塊板之間,直至梳子齒底部到達前玻璃板的頂部,在梳子齒端避免留下氣泡。 (6) 放置 30 min,堆積膠可聚合; (7) 待堆積膠聚合后,小心的取出梳子,不要使加樣孔裂縫; (8) 將凝膠置入電泳槽中,并接好正負電極; (9) 將電泳緩沖液加入內外電泳槽中。 確保凝膠的上部和底部都浸在緩沖液中。 5. 樣品制備 (1)加樣孔的樣品容量(Mini-Gel 系統) (2) 將蛋白質樣品和樣品緩沖液(20 ul + 5 ul)在 Eppendorf 管中混勻; (3) 用微量注射器將樣品加入加樣孔中; (4) 在加入不同的樣品之前。用注射器抽吸少量的電泳緩沖液沖洗注射器,以避免樣品間的相互污染。 6. 電泳 (1) 將電極插頭與適當的電極相接,對于體育 pH 8.8 的凝膠,電流應流向陽極; (2) 將電壓調至 100~200 V; (3) 電泳值示蹤染料的前沿遷移到距凝膠底部約 1~5 mm處; (4) 關閉電源; (5) 拔掉電極插頭; (6) 取出電泳凝膠板,放在一個安全的地方,輕輕撬開凝膠兩邊的玻璃板,使膠粘在其中的一塊板上。 7. 凝膠染色 (1) 戴手套,將凝膠轉移到一個含有約20 ml考馬斯亮藍的培養皿內; (2) 在搖床上緩慢震蕩,0.75 mm 的膠需要 5~lO min。1.5 mm 的凝膠需要 10~20 min,; (3) 去除染液; (4) 加入約 50 ml 脫色液,繼續輕微震蕩; (5) 為了脫色完全,需數次更換脫色液并震蕩過夜;可進行干膠保存。
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